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【完整版】小鼠灌流及取腦實驗 Protocol,新手也能輕松上手

2025-10-11 17:32:20

來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學整體課題外包平臺

    普拉特澤生物為廣大生命科學研究人員提供動物實驗,可根據(jù)實方案的要求選擇不同的檢測方法,本文就跟大家一起繼續(xù)探究小鼠灌流及取腦實驗 Protocol,新手也能輕松上手~·
在對腦組織進行切片和免疫染色或原位雜交等實驗之前,為了排除血液對實驗的干擾,通常會對小鼠心臟灌流后再進行解剖和切片。
實驗前準備

1)灌流裝置:50mL 注射器 + 輸液管、灌流針頭(23G 或 25G 靜脈輸液針,剪去針尖斜面保留鈍頭,避免刺破血管)。(或有的實驗室可直接用注射泵)

2)手術(shù)器械:眼科剪(直 / 彎各 1 把)、眼科鑷(直 / 彎各 1 把)、止血鉗(2 把)、大頭針、泡沫板、培養(yǎng)皿(6cm/10cm,用于盛放組織)。

3)其他:2個50ml離心管、PBS、4% 多聚甲醛(PFA)固定液<有毒注意安全>、塑料袋(裝小鼠尸體)、手術(shù)巾、一次性手套口罩。

實驗步驟

麻醉固定


1)麻醉:腹腔注射4%水合氯醛0.1ml/10g):夾捏后肢無反應(yīng)、呼吸平穩(wěn)。(現(xiàn)在水合氯醛不符合動物倫理,不鎮(zhèn)痛,按需換用其他麻醉方式:舒泰,各種牌子的肌松,戊巴比妥,三溴乙醇,異氟烷等)

2)固定:仰臥位固定于泡沫板上,用大頭針固定四肢(前肢呈 “外八字”,后肢伸直),腹部朝上,用手術(shù)巾擦拭腹部及胸部毛發(fā)。

(附:腹腔注射)

1)抓取小鼠:

放在飼養(yǎng)籠上,提其尾巴中部,水平偏下往后輕拉,小鼠爪子會自然會抓住籠子,此時應(yīng)該迅速抓住小鼠的頸背部的皮毛,最好是抓在小鼠的耳朵處,這樣可以更好固定小鼠的頭部,以防被咬。(但切記力氣不要過大,容易使小鼠窒息)。

再將小鼠的尾巴用左手無名指或小拇指固定,這樣就可以將小鼠整個軀干固定好,注意一定要讓小鼠處于一個舒服的體位,如果小鼠軀干不能保持豎直,很容易扎到臟器,引起出血,影響實驗。

2)注射:

抓取小鼠后,應(yīng)腹部向上,頭呈低位(使臟器移至低位,避免扎傷)。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位為小鼠后肢根部連線處任一側(cè)1.5cm處(建議從左側(cè)進針,右側(cè)重要器官比較多 避免扎入),緩慢以45度左右進針,進針深度小于1cm,進針的感受為局部皮膚凹陷消失和落空感,可回抽看是否有血液/尿液。

3)拔針:

為了防止漏液,輕微旋轉(zhuǎn)針頭,再緩緩拔出。

在實驗前,準備酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能給下一只小鼠使用,避免交叉感染。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮膚,可以明顯辨別藥物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。

暴露心臟與血管


1)剪開皮膚:用眼科剪從劍突下沿腹中線向上剪開皮膚(長度約 2cm),再向兩側(cè)橫向剪開,暴露胸肌。


打開胸腔:用眼科剪沿肋骨兩側(cè)(避開心臟)向上剪開胸骨,打開胸腔,此時可見心臟(左心室呈粉紅色,右心房呈暗紅色)。


灌流操作


1)進針:左手持止血鉗固定心臟,右手將灌流針頭(提前連接輸液管,排空氣泡)從左心室心尖部(左心室最下端的尖狀結(jié)構(gòu))斜向頭端刺入(角度約 30°,深度 3-5mm)刺入后用止血鉗將針頭與心肌一起夾住固定(避免針頭脫出)


2)剪開右心耳:用眼科鑷提起右心耳(右心房上方的暗紅色小囊狀結(jié)構(gòu)),用眼科剪剪一小口(約 1mm),作為灌流液流出通道(放血口)。


3)PBS 沖洗(去血):推注注射器,先灌注 0.01M PBS(37℃或室溫,20g 小鼠用量 15-20mL,速度 5-10mL/min),先慢后快。觀察指標:右心耳流出液從紅色逐漸變清,肝臟由紅變白,四肢輕微抽搐后停止,說明血液沖洗充分(約 3-5 分鐘)。


4)PFA 固定:PBS 沖洗完成后,迅速切換至 4% PFA(4℃,用量與 PBS 相同,速度稍慢至 3-5mL/min)。觀察指標:灌流時小鼠四肢逐漸僵硬,腹部鼓起,口鼻有少量固定液溢出,說明固定液已擴散至全身(約 5-8 分鐘)(尾巴翹起說明灌流效果好)。


(步驟3)和4)也可用注射泵


5)終止灌流:PFA 灌流結(jié)束后,先拆開注射器輸液管,再拔出針頭,避免液體回流。

取腦組織


1)斷頭存放:從緊貼著耳朵后面的地方斷頭,迅速把頭放進生理鹽水的冰水混合物里,冷卻30s。


2)開顱取腦:

從兩耳之間剪皮至兩眼之間,把鼠的頭皮整個往上扒,橫截面可見一個白點,是延髓;

從有延髓的孔把周圍的骨頭沿著上下左右的生長方向拔掉,可見小腦;

小腦上方可見四大片頭蓋骨,逐個向上掀開,可見完整大腦;

用彎鑷從大腦最前端伸入大腦下方,拔斷十二對腦神經(jīng)和小腦神經(jīng)連接,

即可取出。


3)標本后固定、脫水:

將游離出的全腦放入 4%多聚甲醛 PBS 中,放于 4°C 后固定(不超過 24 小時)。

PBS 清洗后脫水(30%的蔗糖溶液沉底)處理。
文源自粥小八
如侵則刪

要資質(zhì)有資質(zhì)

要經(jīng)驗有經(jīng)驗

要案例有案例

好,小鼠灌流及取腦實驗 Protocol就介紹到這里啦~

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