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qPCR引物設計流程【一文搞懂】

2023-11-16 13:11:45

來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學整體課題外包平臺

  qPCR具有高靈敏度、高特異性、高精度和高重復性等優(yōu)點,被廣泛應用于基因表達譜分析、疾病診斷、藥物療效評估等領域。而qPCR引物設計的合理性和有效性直接影響到實驗結(jié)果的準確性和可靠性,你是否曾經(jīng)在qPCR實驗中苦苦掙扎,不知道如何選擇和設計引物?別慌!普拉特澤生物將為你揭示qPCR引物設計的具體流程,幫助你更好地理解和應用這一重要技術。


一、引物設計的基本原則

1.引物的特異性:引物應與目標基因具有高特異性,避免與其他基因發(fā)生非特異性結(jié)合。

2.引物的長度:通常在18-30個核苷酸之間,以保證引物的特異性和擴增效率。

3.引物的GC含量:GC含量應控制在40%-60%之間,以保證引物的穩(wěn)定性和擴增效率。

4.避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構:這些結(jié)構會影響引物的擴增效率和特異性。

二、qPCR引物設計流程

Ⅰ確定目標基因和引物設計范圍:首先需要確定目標基因,以及引物設計的范圍。通常,引物設計范圍包括基因序列的特異性區(qū)域,以保證引物的特異性。

Ⅱ篩選引物序列:根據(jù)目標基因序列,通過生物信息學軟件篩選合適的引物序列。引物序列應具有高特異性、高靈敏度和低交叉反應等特點。

Ⅲ引物序列合成:將篩選出的引物序列交由專業(yè)公司合成,合成時應提供引物濃度、熒光標記等參數(shù)。

qPCR反應體系配置:將合成的引物、模板DNA、熒光染料等成分按照一定的比例配置成qPCR反應體系。

ⅤqPCR反應條件優(yōu)化: 在配置好反應體系后,需要對qPCR反應條件進行優(yōu)化,包括退火溫度、循環(huán)次數(shù)等參數(shù)的調(diào)整。

Ⅵ數(shù)據(jù)分析和解讀:完成qPCR實驗后,需要對數(shù)據(jù)進行深入分析和解讀??墒褂脤iT的qPCR數(shù)據(jù)分析軟件(如CFX Manager、Bio-Rad qPCR等),對實驗數(shù)據(jù)進行處理和可視化展示,以便研究者更好地理解目標基因的表達情況。

Ⅶ結(jié)果驗證和引物優(yōu)化:根據(jù)數(shù)據(jù)處理結(jié)果,對引物進行驗證和優(yōu)化,以提高qPCR的準確性和穩(wěn)定性。

三、qPCR引物設計優(yōu)化策略   

⑴避免引物自環(huán)和二聚體形成:在引物設計時,應盡量避免引物自環(huán)和二聚體形成,以減少非特異性擴增和引物二聚體的干擾。

⑵增加引物特異性:通過合理設計引物序列,增加引物的特異性,減少與非目標基因的交叉反應。

⑶降低引物間交叉反應:對于多目標基因同時檢測的情況,應盡量降低引物間的交叉反應,以避免相互干擾。

⑷延長引物長度:適當延長引物的長度可以提高qPCR的靈敏度和特異性。但是,過長的引物可能導致合成成本增加和穩(wěn)定性下降。

⑸選擇合適的熒光染料和終止劑:熒光染料和終止劑的選擇對qPCR的準確性和穩(wěn)定性也有重要影響。應根據(jù)實驗需求選擇合適的熒光染料和終止劑。

⑹進行qPCR條件優(yōu)化實驗:對于每個新的qPCR實驗條件,都需要進行優(yōu)化實驗,以確定最佳的反應條件和參數(shù)。

⑺進行陽性對照和陰性對照實驗:在進行qPCR實驗時,應設置陽性對照和陰性對照實驗,以驗證實驗的準確性和穩(wěn)定性。

⑻結(jié)果驗證和分析重復性試驗:對qPCR實驗結(jié)果進行驗證和分析重復性試驗,以確保結(jié)果的準確性和可重復性。

四、總結(jié)

qPCR引物設計是一項精細的工作,需要遵循一定的原則和流程。通過小普的介紹,希望能幫助研究者更好地應用qPCR技術,為基因表達分析提供更準確、可靠的數(shù)據(jù)支持。

普拉特澤,堅持提供真實、完整、唯一原始數(shù)據(jù)、原始圖片。

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