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WB實驗檢測介紹由普拉特澤生物病理實驗平臺為大家總結分享。普拉特澤生物為廣大科研人員提供長期穩(wěn)定的實驗研究技術服務，本文給大家分享咱們技術員長期總結下來的動物組織WB實驗檢測。

一、實驗目的

利用Western Blot技術檢測各樣本中目的蛋白的相對含量

二、實驗步驟

1.蛋白提取

(1)樣本的收集：

細胞：用1 mL生理鹽水對離心下來的細胞進行洗滌，同時將其轉移至1.5 mL的離心管中。

組織：取適量組織剪碎，研磨勻漿。

(2)按1 mL裂解液加10 μL PMSF (100 mM)，搖勻置于冰上。PMSF要搖勻至無結晶時才可與裂解液混合。

(3)根據(jù)細胞量的多少，每管細胞加100-500 μL含PMSF的裂解液，于冰上裂解30 min。

(4)4℃下12000 rpm離心10 min。離心后的上清分裝轉移至1.5 mL的離心管中，用于蛋白定量檢測。若不能及時定量蛋白濃度，請置于-80℃保存。

2.蛋白定量及處理（BCA法）

(1)使用時將BCA試劑盒中 Solution A搖晃混勻，根據(jù)樣品數(shù)量，按50體積Solution A加1體積Solution B (50:1) 配置適量BCA工作液，充分混勻后即成淡綠色的工作液。BCA工作液室溫24 h內穩(wěn)定。

（2)將標準品 (1mg/mL BSA) 按0、1、2、4、6、8、10 μL的量分別加入96孔板中，再加入去離子水將所有標準品補足到10 μL。

（3)加1 μL的樣品到96孔板中，加去離子水補足到10 μL。

(4)各孔加入200 μL BCA工作液，輕輕用移液器吹打混勻（注意不要產(chǎn)生氣泡以免影響讀數(shù)），37℃孵育30 min。

(5)冷卻到室溫后，用酶標儀測定A562的吸光度值。

(6)根據(jù)標準曲線計算出樣品中的蛋白濃度。

(7)蛋白變性處理：蛋白溶液與5×Loading buffer 按照體積比4：1混勻（此時蛋白濃度變成實際檢測濃度的0.8倍），置于沸水中煮10min，冷卻后進行SDS-PAGE電泳，或儲存于-80℃，避免反復凍融。

(8)蛋白濃度的計算公式

舉例標曲為：Y=aX+b（Y為OD值，X為測定濃度）

樣品蛋白濃度=[（Y-b）/a]×稀釋倍數(shù)

3. Western Blot

(1)配制分離膠和濃縮膠：根據(jù)目的蛋白分子量大小，配分離膠和5%濃縮膠。

蛋白分子量（kDa）分離膠濃度%

10-2515

15-5512

25-7010

35-1008

70-3006

(2)上樣：計算含20~80 μg蛋白的溶液體積，即為上樣量。用1×Loading buffer 補至每個加樣孔的總體積一致。

(3)電泳：濃縮膠電壓為80 V，40 min，分離膠電壓120 V，30-50 min。溴酚藍跑至膠底即可終止電泳，進行轉膜。

(4)轉膜：恒壓100V，0.45/0.22 μm PVDF膜。

(5)封閉：將PVDF膜完全浸沒在5% milk-PBST或5% BSA-PBST中，室溫輕搖60 min或4℃過夜。

(6)一抗孵育：用5% BSA-PBST稀釋一抗，4℃孵育過夜。

(7)洗膜：次日取出PVDF膜，PBST洗膜5次，每次6 min。

(8)二抗孵育：PBST稀釋二抗，室溫孵育60 min。

(9)洗膜：PBST洗膜5次，每次6 min。

(10)顯影：ECL A和B液按體積1:1混合后均勻滴加在膜上，按需求設置曝光時間及曝光類型，開始曝光，曝光結束后保存圖片并導出圖片。

4.圖像分析

用圖像分析軟件Image J對圖像進行灰度分析。

WB實驗灰度分析

今天關于WB實驗檢測介紹就分享到這兒啦~如果您在實驗過程中遇到技術問題，或者需要實驗外包和代做，可與我們技術老師聯(lián)系哦：18570028002（微信同號）